细胞分离液是一种经过聚乙烯吡咯烷酮处理过的硅胶颗粒，经过高速离心后可形成连续密度梯度，由于Percoll扩散常数低，所形成的梯度十分稳定。
分离液采用预先形成的密度梯度时可在低离心力(200～1000g)于数分至数十分钟内达到满意的细胞分离结果。此外，细胞分离液不穿透生物膜，对细胞无毒害。
因此广泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒，还可将受损细胞及其碎片与完好的活细胞分离。常用于分离和传话植物原生质体、核、叶绿体、和线粒体。
细胞分离液的配置与使用：
1、不同浓度分离液的制备：先用9份分离液与1份8.5％NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压，然后用生理溶液（0.85％NaCl或0.15MPBS）稀释到所需浓度。
2、不连续密度梯度层的制备：先将试管壁用牛血清湿润，除去多余血清，这种预处理可使逐层叠加的液平稳沿管壁流下，使形成满意的界面。在制备过程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置，有时相邻两层比重相差不大时，可将液放入注射器中，小针头斜面紧贴管壁，任其自然慢慢流下。
3、装样：样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异，一般加样体积不宜过大，细胞浓度也不可过高，否则会影响细胞的分离和回收。
4、离心：一般采用离心力为400g，时间20～25min。由于多层之间密度差别不大，因此离心机加速、降速时要慢，要平稳。
5、取样：当所要分离的细胞大部分在两层的界面时，可逐层去除液后收集界面部位的细胞;有时大部分细胞位于层中,则需要逐层收集。收获含有液的细胞经2次洗涤后可供培养或检测用。
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