文献背景
近年来基于质谱(MS)的蛋白质组学技术 [ 如激光捕获显微切割(LCM)、基质辅助激光解吸/电离质谱成像(MALDI-MSI)、微支架辅助空间蛋白质组学(MASP)等 ] 在单细胞及空间分辨率解析药物扰动、组织微区室蛋白质组等方面展现潜力,但面临低丰度蛋白检测难、需大量质谱测量、分辨率低等挑战;基于解离的单细胞技术和空间基因组学、转录组学技术在揭示组织结构或细胞状态上存在局限,且仅依赖核酸测量无法反映蛋白质调控及翻译后修饰等关键生物过程;多重检测等基于免疫测定的技术受限于抗体制备成本、检测抗原数量及检测偏倚问题,因此,开发高覆盖度、无偏倚的空间蛋白质组学分析技术成为当前迫切需求。
基本信息
题目:High-resolution spatially resolved proteomics of complex tissues based on microfluidics and transfer learning
期刊:Cell
影响因子:45.5
文章DOI: 10.1016/j.cell.2024.12.023
通讯作者:赵方庆 冀培丰
作者单位:中国科学院动物研究所
索莱宝合作产品 | |
产品货号 | 产品名称 |
K002098P | ActivAbTMAnti-PDIA3 Polyclonal Antibody |
K002913P | ActivAbTMAnti-DCN Polyclonal Antibody |
K002095P | ActivAbTMAnti-MYH11 Polyclonal Antibody |
G1120 | 苏木素伊红(HE)染色试剂盒 |
摘要
尽管近年来基于成像和抗体的方法取得了进展,但在空间蛋白质组学中,实现整个组织的高分辨率深度蛋白质映射仍然是一个重大挑战。目前高分辨率空间质谱蛋白质组学平台(PLATO)已经实现对全组织切片中的数千种蛋白质进行高分辨率映射。通过对小鼠小脑的空间蛋白质组分析,验证了PLATO框架的有效性,单次运行中鉴定出2564个蛋白质组。将PLATO应用于大鼠绒毛和人类乳腺癌样本时,该平台不仅实现了25微米的空间分辨率,还揭示了与疾病状态相关的蛋白质组动态变化。进一步揭示了空间上不同的肿瘤亚型,识别了关键失调蛋白质,并为肿瘤微环境的复杂性提供了新视角。
研究内容及结果
1.芯片上蛋白质组学制备和交叉污染评估
与使用4-己基苯基氮磺酸盐和正十二烷基-β-D-麦芽糖苷的表面活性剂辅助裂解管道法相比,直接裂解管道法鉴定的蛋白质组数量增加了2倍(图1C)。并且改善可能源于消化前胰蛋白酶对微通道的吸附,减少了非特异性蛋白质吸附。芯片内蛋白质组学制备流程能够高效实现蛋白质提取,同时将交叉污染降低。直接裂解技术可在芯片平台上实现高效且无偏倚的组织原位消化,为后续蛋白质组分析提供了可靠的前处理基础(图1D)。
结论
该研究提出了一种名为PLATO(Parallel-flow Projection and Transfer Learning Across Omics data)的空间蛋白质组学技术框架,相较于现有的LCM-MS联用技术(如nanoPOTS、DVP和MASP等方法),PLATO通过创新的微流控并行采样结合迁移学习算法(Flow2Spatial),成功克服了传统方法在组织覆盖范围、通量和分辨率等方面的关键限制。该技术仅需约60次LC-MS/MS检测即可从小鼠小脑组织中鉴定约3000种蛋白质,实现了25 μm的高空间分辨率和全组织层面的蛋白质组测绘,同时显著降低了实验复杂度与成本。
尽管PLATO在空间蛋白质组成像领域取得了重要突破,但仍存在若干需要改进的方向:首先,当前25 μm的分辨率尚未达到单细胞水平,可通过开发更精密的微流控通道(如10 μm)或整合空间转录组数据进行算法优化;其次,需要更快速可靠的质谱检测系统以提升临床适用性;最后,现有技术尚未涵盖蛋白质翻译后修饰(PTMs)的分析,未来可通过在微流控工作流程中引入亲和捕获等富集步骤加以扩展。
总体而言,PLATO技术通过将微流控高通量采样与人工智能算法相结合,为理解生物组织中蛋白质的空间调控机制提供了强有力的工具,其简便的操作流程和优异的性能指标使其在基础研究和临床转化中都具有广阔的应用前景。
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G1100 | 伊红染色液 (HE染色) |
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