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  • GU胱甘肽 S- 转移酶(GST)活性测定试剂盒
产品名称:

GU胱甘肽 S- 转移酶(GST)活性测定试剂盒

产品品牌: SOLARBIO/索莱宝 价格:
厂商性质: 生产厂家 产品时间: 2024-04-13
储存条件
2-8℃
中文名称
GU胱甘肽 S- 转移酶(GST)活性测定试剂盒
有效期
6个月
单位

英文名称
Glutathione S-transferase(GST) Activity Assay Kit
检测方法
紫外分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/48S

产品概述

品牌SOLARBIO/索莱宝CAS详询
分子式详询纯度详询
分子量详询货号BC0350
规格50管/48样供货周期现货
主要用途测定原理:GST催化GSH与CDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;应用领域化工,生物产业,农业,制药,综合


GU胱甘肽S-转移酶(GST)活性检测试剂盒说明书
                                                                                 紫外分光光度法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号:BC0350
规格:50T/48S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件
试剂一液体60 mL×1瓶2-8℃保存
试剂二液体55 mL×1瓶2-8℃保存
试剂三粉剂×12-8℃保存

溶液配制:
试剂三:临用前加6 mL蒸馏水溶解,2-8℃保存4周。
产品说明:
GU胱甘肽S-转移酶(glutathione S-transferaseGST)是一种具有多种生理功能的蛋白质家族,主要存在于细胞质内。GST是体内解毒酶系统的重要组成部分,主要催化各种化学物质及其代谢产物与GSH的巯基共价结合,使亲电化合物变为亲水物质,易于从胆汁或尿液中排泄,达到将体内各种潜在或具备毒性的物质降解并排出体外的目的。因此,GST在保护细胞免受亲电子化合物的损伤中发挥着重要的生物学功能。此外,因为GST具有GSH-Px活性,亦称为non-Se GSH-Px,具有修复氧化破坏的大分子如DNA、蛋白质等的功能。注意,GST催化的反应减少GSH含量,但是不增加*含量。
GST催化GSHCDNB结合,其结合产物的光吸收峰波长为340nm;通过测定340nm波长处吸光度上升速率,即可计算出活性。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
紫外-可见分光光度计、低温离心机、水浴锅/培养箱、可调节移液器、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、1mL石英比色皿、冰和蒸馏水。
“具体操作步骤详见“产品资料"附件"
注意事项:
1. 样本处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力;
2. 细胞中GST活性测定时,细胞数目须在300-500万之间,细胞中GST的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞;
3. 若样本测定吸光度大于1,建议样本用蒸馏水稀释,计算时结果乘以稀释倍数;
4. 测定反应的温度对测定结果有影响,请将反应温度控制在37℃。
实验实例:

  1. 取0.1g月季花朵加入1mL试剂一进行冰浴匀浆,8000g4℃离心10min,取上清,稀释50倍置冰上待测,按照测定步骤操作,测得计算ΔA =A2测定-A1测定)-A2空白-A1空白)=0.647-0.587-0.591-0.539=0.008按样本质量计算得:

GST活性(U/g 质量)=0.23×ΔA÷W×50(稀释倍数)=0.92 U/g 质量。

  1. 取0.1g小鼠肝脏样本加入1mL试剂一进行冰浴匀浆,8000g4℃离心10min,取上清,稀释500倍置冰上待测,按照测定步骤操作,测得计算ΔA =A2测定-A1测定)-A2空白-A1空白)=0.824-0.543-0.591-0.539=0.229,按样本质量计算得:

GST活性(U/g 质量)=0.23×ΔA÷W×500(稀释倍数)=263.35 U/g 质量。
相关发表文献:

  1. Wensu Han,Yemeng Yang,Jinglin Gao,et al. Chronic toxicity and biochemical response of Apis cerana cerana (Hymenoptera: Apidae) exposed to acetamiprid and propiconazole alone or combined. Ecotoxicology. May    2019:28(4):399-411.(IF2.46)

  2. Zhi Zhou,Xiaopeng Yua,Jia Tang,et al. Systemic response of the stony coral Pocillopora damicornis against acute cadmium stress. Aquatic Toxicology. January 2018;(IF3.794)

  3. Le Guan,Muhammad Salman Haider,Nadeem Khan,et al. Transcriptome Sequence Analysis Elaborates a Complex Defensive Mechanism of Grapevine (Vitis vinifera L.) in Response to Salt Stress. International Journal of Molecular Sciences. December 2018;(IF4.183)

  4. Xing Wei,Xuejun Mo,Faliang An,et al. 2′,4′-Dihydroxy-6′-methoxy-3′,5′-*, a potent Nrf2/ARE pathway inhibitor, reverses drug resistance by decreasing glutathione synthesis and drug efflux in BEL-7402/5-FU cells. Food and Chemical Toxicology. September 2018;(IF3.775)

  5. Qiuli OuYang,Nengguo Tao,Miaoling Zhang. A Damaged Oxidative Phosphorylation Mechanism Is Involved in the Antifungal Activity of Citral against Penicillium digitatum. Frontier in Immunology. February 2018;(IF4.259)

  6. Chunsheng Li,Xianqing Yang,Ying Xu,et al. Cadmium detoxification induced by salt stress improves cadmium tolerance of multi-stress-tolerant Pichia kudriavzevii. Environmental Pollution. November 2018;(IF5.714)

  7. Xiao Hui Xu,Yinghui Guo,Hongwei Sun,et al. Effects of Phytase Transgenic Maize on the Physiological and Biochemical Responses and the Gut Microflora Functional Diversity of Ostrinia furnacalis. Scientific Reports. March 2018;(IF4.011)

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