品牌 | SOLARBIO/索莱宝 | CAS | 详询 |
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分子式 | 详询 | 纯度 | 详询 |
分子量 | 详询 | 货号 | BC2645 |
规格 | 100T/96S | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 测定意义:果胶裂解酶(EC4.2.2.10)是果胶酶的重要组成部分,是一种能降解 | 应用领域 | 环保,化工,生物产业,农林牧渔,综合 |
果胶裂解酶(PL)活性检测试剂盒说明书
微量法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号: BC2645
规格: 100T/96S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体120 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 粉剂×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1. 工作液:将试剂一倒入试剂二于50℃水浴中溶解(期间可拿出振荡数次)。该试剂易长菌,配制完成后可-20℃分装保存,可保存12周。
产品说明:
果胶裂解酶(EC4.2.2.10)是果胶酶的重要组成部分,催化果胶分子链的消除裂解。来源比较广泛,主要来源于微生物,在食品加工工业中提高果汁产量方面有重要意义,在减少环境污染和降低能源消耗方面也具有潜在的应用价值。
果胶裂解酶作用于果胶中的α-1,4糖苷键,生成在还原端C4和C5之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸,在235nm处有特征吸收峰,测定235nm下吸光度的上升来表示果胶裂解酶的活性。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。10000g ,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2. 细胞、细菌或真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后10000g,4℃离心10min,取上清置于冰上待测。(细菌、真菌等难以数量计算的微生物也可以称取0.1g 细菌/真菌沉淀来进行前处理)
3. 培养液:直接测定。
二、测定步骤
1、 分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至235nm,蒸馏水调零。
2、 操作表:
试剂名称 | 测定管 | 空白管 |
工作液(μL) | 180 | 180 |
样本(μL) | 20 | - |
蒸馏水(μL) | - | 20 |
混匀同时按下计时器,测定10s时235nm下的初始值A1,40℃反应30min再次测定吸光值A2,计算ΔA测定管=A2测定管-A1测定管,ΔA空白管= A2空白管-A1空白管,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管。空白管只需做1-2次。 |
三、果胶裂解酶活性计算
A、按微量石英比色皿计算:
1. 按照蛋白浓度计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫克蛋白每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×Cpr)÷T=64.1×ΔA÷Cpr
2. 按照样本质量计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每克组织每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×W÷V样总)÷T= 64.1×ΔA÷W
1. 按照细菌、真菌货细胞数量计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每104个细胞每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(U/104 cell)= ΔA÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×N÷V样总)÷T= 64.1×ΔA÷N
3. 按照培养液体积计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫升培养液每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V反总×109÷V样÷T= 64.1×ΔA
ε:不饱和半乳糖醛酸摩尔消光系数,5200 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应总体积,0.0002 L;V样:反应体系中样本体积,0.02mL;V样总:加入提取液体积,1mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g;T:反应时间,30min;109:换算系数,1mol=109nmol;N:细胞数量,以万计。
B、按96孔UV板计算:
将上述公式中的d-1cm修改为d-0.6cm(96孔板光径)进行计算即可。
注意事项:
1、 若A1测定管大于1.5或者ΔA大于0.5,将样本粗酶液用蒸馏水稀释后再进行测定。
2、 建议一次测定不要测定过多样本以免耽误过多的酶促反应时间。
3、 空白管正常情况下变化不超过0.02。
实验实例:
1、 取0.1g香蕉皮加入1mL提取液进行冰浴匀浆。10000g ,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。之后按照测
定步骤操作,用微量石英比色皿测得计算ΔA测定管= A2测定管-A1测定管=0.528-0.5254=0.0026,ΔA=
ΔA测定管-ΔA空白管=0.1551-0.1542=0.0009,按样本质量计算酶活得:
PL活性(U/g 质量)= 64.1×ΔA÷W=1.090 U/g 质量。
2、 取0.1g大肠杆菌沉淀加入1mL提取液冰浴超声波破碎细胞,然后10000g,4℃离心10min,取上清置于冰上,之后按照测定步骤操作,用微量石英比色皿测得计算ΔA测定管= A2测定管-A1测定管=1.2213-0.8277=0.3936,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管=0.1551-0.1542=0.0009,按照样本质量计算酶活得:
3、 PL活性(U/g 质量)= 64.1×ΔA÷W=251.721 U/g 质量。
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