品牌 | SOLARBIO/索莱宝 | CAS | 详询 |
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分子式 | 详询 | 纯度 | 详询 |
分子量 | 详询 | 货号 | BC1500 |
规格 | 50管/24样 | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 植物硝态氮检测 | 应用领域 | 环保,化工,生物产业,农林牧渔,综合 |
植物硝态氮含量检测试剂盒说明书
可见分光光度法
货号:BC1500
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
试剂一 | 粉剂×2瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 液体100 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
标准品 | 粉剂×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂一:临用前根据用量每瓶加入2 mL浓硫酸充分溶解;配制好后尽快使用,2-8℃可保存一周。
2、 标准品:10 mg硝酸钾,临用前加入0.935 mL 蒸馏水溶解,配成1400 μg/mL的NO3-N标准液。
产品说明:
硝酸盐是植物吸收的主要含氮物质之一。硝酸盐在植物体内的还原部位不同,可以在根内,也可以在枝叶内进行,且因植物类别和环境条件而异。因此,测定植物体内硝态氮含量变化对了解氮代谢机制有重要的意义。
在浓酸条件下,NO3-可以与水杨酸反应,生成硝基水杨酸,后者在PH>12的条件下呈黄色,在一定范围内,其颜色深浅与含量成正比,可比色测定计算硝态氮含量。
技术指标:
低检出限:0.7534 μg/mL
线性范围:0.875-84 μg/mL
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、1mL玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、浓硫酸、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
按照质量(g):蒸馏水体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g样本,加入1mL蒸馏水)加入蒸馏水,室温匀浆后置于90℃恒温水浴锅中浸提30min,期间不断晃动或者置于90℃恒温摇床中振荡提取30min,待冷却后于25℃,12000g离心15min,取上清待测。
二、测定步骤
1. 分光光度计预热30min以上,调节波长至410nm,蒸馏水调零。
2. 将1400μg/mL NO3-N标准液用蒸馏水50倍稀释成28μg/mL的标准溶液。
3. 操作表:
试剂名称 | 测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 |
样本(μL) | 40 | 40 | ||
标准溶液(μL) | 40 | |||
蒸馏水(μL) | 60 | 40 | ||
试剂一(μL) | 60 | - | 60 | 60 |
充分混匀,25℃静置30min | ||||
试剂二(μL) | 1400 | 1400 | 1400 | 1400 |
混匀,涡旋振荡,使出现的沉淀充分溶解,取1mL于1mL玻璃比色皿中测定410nm处吸光值A,计算ΔA=A测定管-A对照管,ΔA标准=A标准管-A空白管。 |
三、植物NO3-N的计算
1. 按样本质量计算
NO3- N含量(μg/g 质量)=ΔA÷(ΔA标准÷C标准)×V提取÷W=28×ΔA÷ΔA标准÷W
2. 按样本蛋白浓度计算
NO3- N含量(μg/mg prot)=ΔA÷(ΔA标准÷C标准)×V提取÷(Cpr×V提取)=28×ΔA÷ΔA标准÷Cpr
W:样本质量,g;C标准:标准溶液浓度,28μg/mL;V提取:样本总体积,1mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL。
注意事项:
1.试剂一和试剂二均具有强腐蚀性,操作时需做好防护措施。
2.如果样本吸光值大于1.4,建议将样本用蒸馏水稀释后进行测定。
实验实例:
1、 取0.1g苹果加入1mL蒸馏水进行样本处理,取上清后按照测定步骤操作,测得计算ΔA=A测定管-A对照管=0.560-0.002=0.558,ΔA标准管=A标准管-A空白管=0.563-0.01=0.553,按样本质量计算含量得:
NO3-N含量(μg/g质量)=28×ΔA÷ΔA标准÷W=28×0.558÷0.553÷0.1=282.5 μg/g质量。
2、 取0.1g叶片加入1mL蒸馏水进行样本处理,取上清后按照测定步骤操作,测得计算ΔA=A测定管-A对照管=0.907-0.645=0.262,ΔA标准管=A标准管-A空白管=0.563-0.01=0.553,按样本质量计算含量得:
NO3-N含量(μg/g质量)=28×ΔA÷ΔA标准÷W=28×0.262÷0.553÷0.1=132.7 μg/g质量。
相关发表文献:
[1] Fuyuan Zhu,Moxian Chen,Wailung Chan,et al. SWATH-MS quantitative proteomic investigation of nitrogen starvation in Arabidopsis reveals new aspects of plant nitrogen stress responses. Journal of Proteomics. September 2018;(IF3.537)
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