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  • 辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒
产品名称:

辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒

产品品牌: SOLARBIO/索莱宝 价格:
厂商性质: 生产厂家 产品时间: 2024-04-24
储存条件
-20℃
中文名称
辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒
有效期
6个月
单位

英文名称
CoenzymeⅠNAD(H) Content Assay Kit
检测方法
可见分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/24S

产品概述

品牌SOLARBIO/索莱宝CAS详询
分子式详询纯度详询
分子量详询货号BC0310
规格50管/24样供货周期现货
主要用途测定意义:辅酶ⅠNAD(H)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,NAD+是应用领域化工,生物产业,农业,制药,综合

辅酶Ⅰ NAD(H)含量检测试剂盒说明书

可见分光光度法

注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

货号: BC0310

规格: 50T/24S

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

酸性提取液

液体15 mL×1

2-8℃保存

碱性提取液

液体15 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体20 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体6 mL×1

2-8℃保存

试剂三

液体16mL×1

2-8℃保存

试剂四

液体3 mL×1

-20℃保存

试剂五

液体40 mL×1

2-8℃保存

试剂六

液体75 mL×1瓶(自备)

常温保存

NAD标准品

粉剂×1

-20℃保存

NADH标准品

粉剂×1

-20℃保存

溶液的配制:

1、试剂三:需要严格避光;

2、试剂六:72 mL乙醇和3 mL蒸馏水混合,备用;

3NAD标准品:临用前加入1.5 mL蒸馏水,即2 µmol/mL,将其稀释为1.25 nmol/mLNAD标准溶液备用;

4NADH标准品:临用前加入1.4 mL蒸馏水,即2 µmol/mL,将其稀释为1.25 nmol/mLNADH标准溶液备用。

产品说明:

辅酶I包括还原型和氧化型两种形式,在生物氧化中起传递氢的作用。氧化型辅酶I又称烟酰*腺嘌呤二核苷酸(NAD+)是脱氢酶的辅酶,它在糖酵解、糖异生、三羧酸循环和呼吸链中发挥着不可替代的作用。中间产物会将脱下的氢递给NAD,使之成为NADH(还原型辅酶I)。而NADH则会作为氢的载体,在呼吸链中通过化学渗透偶联的方式,合成ATPNAD(H)在机体内有重要的生理意义,与物质代谢、能量代谢、抗细胞衰老、抗氧化以及一些疾病的发生密切相关。体内辅酶I含量降低会导致细胞损伤或衰亡。

分别用酸性和碱性提取液提取样品中NAD+NADHNADH通过PMS的递氢作用,还原氧化型噻唑蓝(MTT)为甲瓒,在570nm下检测吸光值, NAD+可被乙醇脱氢酶还原为NADH,进一步采用MTT还原法检测。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、台式离心机、移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、NAD+NADH的提取(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、血清(浆)中NAD+NADH的提取:

NAD+的提取:取0.1mL血清(浆),加入0.5mL酸性提取液,煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴冷却后,10000g 4℃离心10min;取上清200µL,加入等体积碱性提取液;混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

NADH的提取:取0.1mL血清(浆),加入0.5mL碱性提取液,煮沸 5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴冷却后,10000g 4℃离心10min,取上清200µL,加入等体积酸性提取液;混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

2、组织中NAD+NADH的提取:

NAD+的提取:称取约0.1g组织,加入0.5mL酸性提取液,冰浴研磨,煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴冷却后,10000g 4℃离心10min,取上清200µL,加入等体积碱性提取液混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

NADH的提取:称取约0.1g组织,加入0.5mL碱性提取液,冰浴研磨,煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴冷却后,10000g 4℃离心10min,取上清200µL,加入等体积酸性提取液混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

3、细胞或细菌中NAD+NADH的提取:

NAD+的提取:收集500万细胞或细菌,加入0.5mL酸性提取液,超声波破碎1min(功率200W,超声2s,停1s),煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心10min,取上清液200μL至另一新的离心管中,加入等体积的碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

   NADH的提取:收集500万细胞或细菌,加入0.5mL碱性提取液,超声波破碎1min(功率200W,超声2s,停1s),煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心10min,取上清液200μL至另一新的离心管中,加入等体积的酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心10min,取上清,冰上保存待测。

二、测定步骤

1、 分光光度计预热30分钟以上,调节波长至570nm,蒸馏水调零。

2、 操作表(在1.5mL棕色EP管中按下表依次加样)

试剂名称

对照管(µL)

测定管(µL)

NADNADH标准管(µL)

空白管(µL)

上清液

50

50

-

-

标准溶液

-

-

50

-

蒸馏水

-

-

-

50

试剂五

500

-

-

-

试剂一

250

250

250

250

试剂二

75

75

75

75


试剂三

150

150

150

150

试剂四

35

35

35

35

充分混匀,室温避光静置20min


试剂五

-

500

500

500

充分混匀,静置5min后,15000rpm25℃离心15min,弃上清,沉淀中加入:

试剂六

1000

1000

1000

1000

混匀, 570nm下比色,读取吸光值ΔA测定=A测定管-A对照管NAD标准管的记为ΔA标准1=A标准管1-A空白管。NADH标准管的记为ΔA标准2=A标准管2-A空白管。(空白管只需做1-2次)

三、NAD+含量的计算

1、血清(浆)中NAD+含量计算

NAD+nmol/mL=ΔA测定÷ΔA标准1÷C标)×V提取÷V血清=12.5×ΔA测定÷ΔA标准1

2、组织、细菌、细胞中NAD+含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NAD+ nmol/mg prot=ΔA测定÷ΔA标准1÷C标)×V提取÷(V提取×Cpr)= 1.25×ΔA测定÷ΔA标准1 ÷ Cpr

(2)按样本质量计算

NAD+nmol/g 质量)=ΔA测定÷ΔA标准1÷C标)×V提取÷W= 1.25×ΔA测定÷ΔA标准1÷W

(3)按细菌或细胞数量计算

NAD+nmol/104 cell=ΔA测定÷ΔA标准1÷C标)×V提取÷500=0.0025×ΔA测定÷ΔA标准1

四、NADH含量的计算

1、 血清(浆)中NADH含量计算

NADHnmol/mL=ΔA测定÷ΔA标准2÷C标)×V提取÷V血清=12.5×ΔA测定÷ΔA标准2

2、组织中NADH含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NADHnmol/mg prot=ΔA测定÷ΔA标准2÷C标)×V提取÷(V样品×Cpr)=1.25×ΔA测定÷ΔA标准2÷ Cpr

(2)按样本质量计算

NADHnmol/g 质量)=ΔA测定÷ΔA标准2÷C标)×V提取÷W=1.25×ΔA测定÷ΔA标准2÷W

(3)按细菌或细胞数量计算

NADHnmol/104 cell=ΔA测定÷ΔA标准2÷C标)×V提取÷500=0.0025×ΔA测定÷ΔA标准2

C标:NADNADH标准溶液的浓度,1.25nmol/mLCpr:蛋白浓度,mg/mLV提取:加入提取液总体积,1mLV血清:提取时加入的血清体积,0.1mLW:样本质量,g500500万个细胞。

注意事项:

1、操作过程应避光。不可将试剂一、二、三混合后再加,必须分开加。

2反应过程要注意避光

3、当吸光值大于1时,建议稀释后测量,计算公式中应当乘以稀释倍数。

实验实例:

1、 NAD+的提取:称取约0.1g肺,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.341-0.321=0.02ΔA标准1=A标准1-A空白=1.045-0.246=0.799,按样本质量计算NAD+ 含量得:NAD+ (nmol/g 质量)=1.25×ΔA测定÷ΔA标准1÷W=1.25×0.02÷0.799÷0.1=0.3129 nmol/g 质量。

NADH的提取:称取约0.1g肺,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.2-0.136=0.064ΔA标准2=A标准2-A空白=0.687-0.252=0.435,按样本质量计算NADH 含量得:NADH(nmol/g 质量)=1.25×ΔA测定÷ΔA标准2÷W=1.25×0.064÷0.435÷0.1=1.839 nmol/g 质量。

2、 NAD+的提取:称取约0.1g柳树叶,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定=A测定- A对照=0.259-0.129=0.13ΔA标准1=A标准1-A空白=1.045-0.246=0.799,按样本质量计算NAD+ 含量得:NAD+ (nmol/g 质量)= 1.25×ΔA测定÷ΔA标准1÷W=1.25×0.13÷0.799÷0.1=2.03379 nmol/g 质量。

NADH的提取:称取约0.1g柳树叶,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定= A测定-A对照=0.194-0.086=0.108ΔA标准2=A标准2-A空白=0.687-0.252=0.435,按样本质量计算NADH 含量得:NADH  (nmol/g 质量)=1.25×ΔA测定÷ΔA标准2÷W=1.25×0.108÷0.435÷0.1=3.1034 nmol/g 质量。

3、 NAD+的提取:称取约0.1mL马血清,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.091-0.061=0.03ΔA标准1=A标准1-A空白=1.045-0.246=0.799,按液体体积计算NAD+ 含量得:NAD+含量(nmol/mL=12.5×ΔA测定÷ΔA标准1=12.5×0.03÷0.799=0.4693 nmol/mL

NADH的提取:称取约0.1mL马血清,按照提取和测定步骤操作,测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.126-0.1=0.026ΔA标准2=A标准2-A空白=0.687-0.252=0.435,按液体体积计算NADH 含量得:NADH含量(nmol/mL=12.5×ΔA测定÷ΔA标准2=12.5×0.026÷0.435=0.7471 nmol/mL

相关发表文献:

[1] Xiaofen Fu,Pengsong Li,Lei Zhang,et al. Understanding the stress responses of Kluyveromyces marxianus after an arrest during high-temperature ethanol fermentation based on integration of RNA-Seq and metabolite data. Applied Microbiology and Biotechnology. March 2019;103(6) :2715–2729.(IF3.67)

[2] Mengqing Tao,Jia Jiang,Lin Wang,et al. α-Mangostin Alleviated Lipopolysaccharide Induced Acute Lung Injury in Rats by Suppressing NAMPT/NAD Controlled Inflammatory Reactions. Evidence-Based Complementary and

Alternative Medicaine. 2018;(IF1.984)

[3] Bin Zhang,Dongmei Shi, Xiangyu Zhang,et al. FK866 inhibits the epithelial-mesenchymal transition of hepatocarcinoma MHCC97-H cells. Oncology Letters. October 2018;(IF1.871)

[4] Yang K, Yin Q, Mao Q, et al. Metabolomics analysis reveals therapeutic effects of α-mangostin on collagen-induced arthritis in rats by down-regulating nicotinamide phosphoribosyltransferase[J]. Inflammation, 2019, 42(2): 741-753.

参考文献:

[1] Ying W. NAD+/NADH and NADP+/NADPH in cellular functions and cell death: regulation and biological consequences[J]. Antioxidants & redox signaling, 2008, 10(2): 179-206.

[2] Gibon Y, Larher F. Cycling assay for nicotinamide adenine dinucleotides: NaCl precipitation and ethanol solubilization of the reduced tetrazolium[J]. Analytical biochemistry, 1997, 251(2): 153-157.

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