品牌 | SOLARBIO/索莱宝 | CAS | 详询 |
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分子式 | 详询 | 纯度 | 详询 |
分子量 | 详询 | 货号 | BC1085 |
规格 | 100T/96S | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 测定意义:ADH是生物体内短链醇代谢的关键酶,催化乙醇与乙醛可逆转换,在很多生理 | 应用领域 | 环保,化工,生物产业,农林牧渔,综合 |
乙醇脱氢酶(ADH)活性检测试剂盒说明书
微量法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号:BC1085
规格:100T/96S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体110 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
粉剂一 | 粉剂×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体20mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×2支 | -20℃保存 |
试剂三 | 液体3 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
提取液:临用前将粉剂一倒入提取液中,溶液为悬浊液,使用前需摇匀;
试剂二:临用前取1支试剂二加入1mL蒸馏水,可以-20℃分装保存4周,避免反复冻融。1支即可做100T,为延长试剂盒使用时间,遂多给一支。
产品说明:
ADH是生物体内短链醇代谢的关键酶,催化乙醇与乙醛可逆转换,在很多生理过程中起着重要作用。哺乳动物ADH主要在肝脏生成,肝脏损伤导致ADH释放到血清中。血清ADH活性高低反映了肝功能是否异常。
ADH催化NADH还原乙醛生成乙醇和NAD+,NADH在340nm处有吸收峰,而NAD+没有;测定340nm 吸光度下降速率,来计算ADH活性。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
冰、低温离心机、紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、微量石英比色皿/96孔板(UV板)、可调式移液器、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1、 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆。16000g,4℃离心20min,取上清置冰上待测。
2、 细菌、细胞:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300W,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);16000g,4℃离心20min,取上清液置冰上待测。
3、血清等液体:直接测定。
二、测定步骤
紫外分光光度计/酶标仪预热30min,调节波长到340nm,紫外分光光度计用蒸馏水调零。
试剂一在25℃水浴中保温30min以上。
空白管:在微量石英比色皿//96孔板(UV板)中依次加入20μL蒸馏水、8μL试剂二、152μL试剂一和20μL试剂三,迅速混匀后于340nm测定吸光值变化,分别记录15s和75s时吸光值,分别记为A1和A2。ΔA空白管=A1-A2。(空白管只需做1~2个)
测定管:在微量石英比色皿//96孔板(UV板)中依次加入20μL上清液、8μL试剂二、152μL试剂一和20μL试剂三,迅速混匀后于340nm测定吸光值变化,分别记录15s和75s时吸光值,分别记为A3和A4。ΔA测定管=A3-A4。
三、ADH活性计算
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下
(1)按蛋白浓度计算
活性单位定义:25℃中每毫克蛋白每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/mg prot) =[(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(Cpr×V样)÷T
=1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管) ÷Cpr
(2)按样本质量计算
活性单位定义:25℃中每克组织每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/g 质量) =[(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106] ÷(W×V样÷V样总)÷T
=1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管)÷W
(3)按细胞数量计算
活性单位定义:25℃中每104个细胞每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U /104 cell) = [(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
=1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管) ÷细胞数量
(4)按液体体积计算
活性单位定义:25℃中每毫升样本每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/mL) = [(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷V样÷T=1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管)
ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应体系总体积,200μL=2×10-4L;106:单位换算系数,1mol=1×106μmol;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;V样:加入反应体系中上清液体积,20μL=0.02mL;V样总:提取液体积,1mL;T:反应时间,1min;细胞数量:以万计。
b.使用96孔板测定的计算公式如下
(1)按蛋白浓度计算
活性单位定义:25℃中每毫克蛋白每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/mg prot) =[(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(Cpr×V样)÷T
=2.68×(ΔA测定管–ΔA空白管) ÷Cpr
(2)按样本质量计算
活性单位定义:25℃中每克组织每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/g 质量) =[(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(W×V样÷V样总)÷T
=2.68×(ΔA测定管–ΔA空白管)÷W
(3)按细胞数量计算
活性单位定义:25℃中每104个细胞每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/104 cell) = [(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
=2.68×(ΔA测定管–ΔA空白管) ÷细胞数量
(4)按液体体积计算
活性单位定义:25℃中每毫升样本每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。
ADH (U/mL) = [(ΔA测定管–ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷V样÷T=2.68×(ΔA测定管–ΔA空白管)
ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:96孔板光径,0.6cm;V反总:反应体系总体积,200μL=2×10-4L;106:单位换算系数,1mol=1×106μmol;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL,需要自行测定;W:样本质量,g;V样:加入反应体系中上清液体积,20μL=0.02mL;V样总:提取液体积,1mL;T:反应时间,1min;细胞数量:以万计。
注意事项:
若A3大于1.5或者A3小于A1,则需要将样本用蒸馏水稀释再进行测定,计算公式注意乘以稀释倍数。
实验实例:
取0.1g大鼠肝脏加入1mL提取液进行匀浆研磨,取上清后按照测定步骤操作,用微量石英比色皿测得计算ΔA空白管=A1-A2=0.5718-0.5648=0.007,ΔA测定管=A3-A4=0.8351-0.5341=0.301,按样本质量计算酶活得:
ADH (U/g 质量) =1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管)÷W=1.61×(0.301-0.007)÷0.1=4.7334 U/g 质量。
取马血清直接检测,用微量石英比色皿测得计算ΔA空白管=A1-A2=0.5718-0.5648=0.007,ΔA测定管=A3-A4=0.6369-0.6036=0.0333,按液体体积计算酶活得:
ADH ((U/mL) =1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管)=1.61×(0.0333-0.007)=0.042343 U/mL。
取小鼠血浆直接检测,用微量石英比色皿测得计算ΔA空白管=A1-A2=0.5718-0.5648=0.007,ΔA测定管=A3-A4=0.7381-0.7093=0.0288,按液体体积计算酶活得:
ADH (U/mL) =1.61×(ΔA测定管–ΔA空白管)=1.61×(0.0288-0.007)=0.035098 U/mL。
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